Текст произведения
(PDF):
Читать
Скачать
Введение В связи с расширением ассортимента ржаных сортов хлебобулочных изделий и появлением предприятий малой мощности актуален вопрос создания более гибкого, ресурсосберегающего производства на основе ускоренных и упрощенных способов выведения заквасок. При этом важным остается сохранение таких показателей качества, как вкус, аромат, внешний вид хлеба и сроки его хранения [1]. Важнейшими показателями хлебобулочных изделий является их кислотность, которая создается в результате жизнедеятельности молочнокислых бактерий. Им принадлежит ведущая роль в брожении ржаных полуфабрикатов. Во-первых, молочная кислота существенно влияет на физические свойства ржаного теста. Известно, что ржаная мука в отличие от пшеничной не имеет клейковины, создающей упругий и эластичный каркас теста. Кислотность способствует набуханию и пептизации белков ржаной муки, за счет чего увеличивается вязкость теста и возрастает его газоудерживающая способность. Кроме того, ржаная мука содержит активный фермент амилазу, которая приводит к накоплению в тесте декстринов. Последние делают мякиш ржаного хлеба липким и заминающимся. Подавить активность амилазы можно путем повышения кислотности закваски. Во-вторых, гетероферментативные молочнокислые бактерии участвуют в разрыхлении теста в результате образования углекислого газа. Указанная особенность молочнокислых бактерий была использована при попытке разработать способ получения ржаного хлеба на густых заквасках без применения дрожжей, на одних культурах газообразующих молочнокислых бактерий. Для подавления развития дрожжей густые закваски вели при температуре 35 °С. В промышленности данный способ не нашел применения. На этом же принципе основана Саратовская схема приготовления жидких ржаных заквасок. Правда, в условиях жидкой закваски дрожжи S. cerevisiae развиваются спонтанно и спиртовое брожение идет интенсивно наряду с молочнокислым. В-третьих, молочнокислые бактерии оказывают большое влияние на вкус и аромат ржаного хлеба. Принято считать, что вкус и аромат хлеба во многом определяются соотношением молочной и летучих кислот. Это соотношение называется коэффициентом брожения. Молочная кислота придает ржаному хлебу приятный кисловатый вкус, а летучие кислоты - специфический аромат. Кроме летучих кислот, определенное влияние на аромат хлеба оказывают органические ди- и трикарбоновые кислоты. По данным М.И. Княгиничева и П.М. Плотникова, в ржаном хлебе из обойной муки содержится около 60 % молочной кислоты, 32 % летучих кислот и 8 % органических кислот (янтарной, яблочной, винной и лимонной). Из общей суммы летучих кислот в ржаном хлебе на долю уксусной приходится 38-65 %, на долю пропионовой 28-52 % и муравьиной 1,16-10,7 %. По существующим представлениям большую роль в образовании ароматического комплекса хлеба играют карбонильные соединения. К ним относятся альдегиды (ацетальдегид, бензальдегид, изовалериановый, коричный, сиреневый), ванилин, оксиметил-фурфурол, ацетоин, диацетил, диоксиацетон, фурфурол. В настоящее время в хлебе найдено свыше 75 отдельных вкусовых и ароматических веществ, среди них 28 кислот, 28 карбонильных соединений, 11 спиртов, 6 эфиров, аммиак, метилмеркаптан. В образовании многих из упомянутых выше веществ участвуют и молочнокислые бактерии. При этом гомо- и гетероферментативные виды образуют в процессе брожения различные продукты. Кислотообразующая микрофлора спонтанных густых заквасок довольно разнообразна [2]. Доминирующими видами в ней являются L. plantarum и L. brevis, довольно часто встречается L. fermentum, в меньшем количестве - L. casei и L. buchneri. Термофильный вид L. leichmannii найден в единичных случаях, a L. delbruckii вовсе не обнаружен. Таким образом, для густых ржаных заквасок специфичны два вида молочнокислых бактерий - L. brevis и L. plantarum, что связано, очевидно, с температурным режимом ведения густых заквасок, который близок к оптимальной температуре развития для данных видов бактерий. Виды L. casei, L. fermentum и L. buchneri при внесении в густые закваски не выдерживали конкуренции со спонтанной микрофлорой муки. Жидкие ржаные закваски по видовому составу кислотообразующей микрофлоры мало отличаются от густых. В них обнаружены те же виды бактерий: L. plantarum, L. brevis, L. fermentum, L. casei и в единичных случаях L. buchneri и L. delbruckii. Однако в брожении жидких заквасок виды L. fermentum и L. casei играют существенную роль наряду с L. brevis и L. plantarum. По-видимому, температура жидких заквасок 32-35 °С оказывает благоприятное воздействие на виды L. casei и L. fermentum, для которых оптимум температуры лежит выше 30 °С. Помимо этого, на видовой состав микрофлоры жидких заквасок накладывает отпечаток применение чистых культур. Виды L. casei, L. fermentum и L. buchneri при внесении в густые закваски не выдерживали конкуренции со спонтанной микрофлорой муки. Г. Юодейкене и И. Шаломскене были выделены из спонтанных ржаных заквасок и идентифицированы молочнокислые бактерии из рода Pediococcus. Исследования показали, что P. acidilactici продуцируют бактериоцины, которые подавляют размножение спор Вacillus subtilis и оказывают антибактериальное влияние на широкий спектр молочнокислых бактерий. Кроме того, P. acidilactici подавляет развитие одних из наиболее распространенных в пекарнях плесневых грибов Penicillium commune. Установлено, что закваски, приготовленныe на P. acidilactici, оказывают положительное влияние на объем изделий из пшеничной муки, а также такие показатели текстуры мякиша, как твердость и пористость, в результате изделия сохраняли свежесть после 72 часов хранения и не плесневели. Испытание молочнокислых бактерий (Pediococcus pentosaceus MI808, Pediococcus pentosaceus MI809, Pediococcus pentosaceus MI810, Pediococcus acidilactici MI807 и Lactobacillus sakei MI806), выделенных из спонтанных ржаных заквасок и отобранных по высокой антимикробной активности по отношению к микроскопическим грибам, показало высокую эффективность в получении ферментированных продуктов, предназначенных для производства пшеничного хлеба [3, 4]. Практика приготовления ржаных заквасок показала, что наряду с традиционными видами L. casei, L. fermentum и L. buchneri в ржаных заквасках стали появляться другие виды молочнокислых микроорганизмов, относящиеся к роду Pediococcus, обладающие антагонистической активностью к плесневым грибам. Проведенные нами исследования подтверждают эти данные. Целью данной работы является скрининг активных культур для нового консорциума молочнокислых бактерий и дрожжей для приготовления ржаных заквасок, с высокими антагонистическими и технологическими свойствами, отвечающими высоким стандартам и современным требованиям хлебопечения. Объекты и методы исследований Объектами исследования явились коллекционные культуры молочнокислых бактерий рода Lactobacillus, выделенные ранее из зерна пшеницы и муки, и изоляты культур молочнокислых бактерий, выделенных из ржаной муки и заквасок, различных сроков хранения. Для выделения и культивирования молочнокислых бактерий использовали следующие питательные среды: а) среда МRS: дрожжевой автолизат - 5 мл, пептон - 10 г, глюкоза - 20 г, лимоннокислый аммо-ний - 2 г, уксуснокислый натрий - 5 г, MgSO4 x х 7H2O - 200 г, MnSO4 x 4H2O - 50 мг, K2PO4 - 2 г, твин 80 - 1 мл, агар-агар - 20 г, вода - 1 л, рН 6,2-6,6; б) для определения антагонистической активности молочнокислых бактерий в отношении Bacillus subtilis использовали твердую питательную среду сусло-агар в смеси с МПА в соотношении 1:1; в) основа бульона с бромкрезоловым пурпурным для определения сбраживания углеводов и диски с углеводами. Выделение, поддержание и исследование промышленно-ценных культур микроорганизмов осуществляли согласно стандартному протоколу исследований, разработанному нами в 2008 году. Физиолого-биохимическую и антагонистическую активность молочнокислых бактерий определяли согласно общепринятым методикам. Антагонистическую способность молочнокислых бактерий определяли методом отсроченного антагонизма диффузией в агар продуктов жизнедеятельности молочнокислых бактерий [5]. В качестве тест-культуры для определения антагонистической активности использованы бактерии Bacillus subtilis, эталонный штамм АТСС 6633 для определения активности антибиотиков. Биосовместимость исследуемых молочнокислых бактерий и дрожжей в консорциуме определяли методом прямого совместного культивирования испытуемого и индикаторного штаммов на плотной питательной среде МРС, предложенным Н.А. Глушановой [6]. Видовую принадлежность микроорганизмов устанавливали по определителю Берги [7]. Результаты и их обсуждение В процессе проводимых исследований были выделены чистые культуры бактерий из ржаной муки и сухих ржаных заквасок, которые хранились в коллекции Казахского научно-исследовательского института перерабатывающей и пищевой промышленности в течение 10-12 лет. Были изучены морфологические и культурально-биохимические свойства культур. Выделенные культуры были исследованы на способность расти при различных температурах. Эта способность часто является одним из наиболее надежных признаков для предварительной идентификации выделенных штаммов. В результате было установлено, что выделенные культуры можно отнести к двум группам - бактерии, которые имеют температурный оптимум развития в пределах 45-48 °С, а также способных расти при 15 °С, и бактерии, которые не развиваются при низких температурах (15 °С). Все исследуемые культуры при сбраживании глюкозы не образовывали газ, но все образовывали аммиак из аргинина. Известно, что все молочнокислые бактерии обладают выраженной сахаролитической активностью, что лежит в основе классических систем идентификации. Определение ферментации углеводородов проводили с использованием дисков с углеводами и бульона с бромкрезоловым пурпурным. В состав пестрого ряда входили 16 субстратов (сахаров и многоатомных спиртов). Исследованные культуры, которые сбраживали целлобиозу, маннозу, арабинозу, мальтозу, ксилозу, трегалозу, салицин, галактозу и меллибиозу, были отнесены к виду Pedicoccus acidilactici. Выделенные штаммы характеризовались по физиолого-биохимическим показателям (табл. 1). Наибольшую кислотообразующую и антагонистическую активность проявил штамм молочнокислых бактерий Р1-6 - Pediоcoccus acidilactici, отобранный нами для дальнейшей работы. Наряду со штаммом Pediоcoccus acidilactici Р1-6 для создания нового консорциума для приготовления ржаной закваски нами исследованы коллекционные штаммы из рода Lactobacillus: Lactobacillus paracasei 2, Lb. casei 104, Lb. casei 22, Lb. pontis 67, Lb. paracasei 127, Lb. helveticus 4Ш1, Lb. pontis 9K3, Lb. paracasei 129 и дрожжи Saccharomyces cerevisiae ЛВ и Saccharomyces cerevisiae A-28, обладающие соответствующими технологическими и биологическими свойствами. Таблица 1 Характеристика физиолого-биохимических показателей молочнокислых бактерий Штамм рН Титруемая кислотность, град Антагонистическая активность, диаметр, мм М1 Pediоcoccus acidilactici 4,15 33,2±3,1 21±2,2 М3 Pediоcoccus acidilactici 4,18 33,8±3,1 20±1,0 Р1-6 Pediоcoccus acidilactici 4,22 33,8±3,2 22±2,3 Р2-5 Pediоcoccus acidilactici 4,97 19,5±1,5 12±1,1 Р2-6 Pediоcoccus acidilactici 4,20 31,2±3,1 21±2,1 Р3-6 Pediоcoccus acidilactici 4,21 34,8±3,2 20±1,0 Р4-5 Pediоcoccus acidilactici 4,17 42,4±3,6 20±1,0 Особую значимость изучение биосовместимости (межштаммовых антагонистических взаимодействий) микроорганизмов приобретает в свете внедрения в технологические циклы метода совместного культивирования, который является перспективным при создании препаратов и продуктов на основе нескольких штаммов молочнокислых бактерий. Перспективными в этом отношении можно считать штаммы молочнокислых бактерий, которые обладают выраженным антагонизмом к патогенным и условно-патогенным микроорганизмам и средним уровнем антагонизма к другим штаммам этого же рода. Нами был изучен характер межштаммовых взаимоотношений культур для ржаных заквасок по антагонистическому действию штаммов друг на друга при совместном их культивировании. Культуры считали биосовместимыми в случае обнаружения полного «слияния» пятен или усиления роста исследуемых штаммов в зоне совместного культивирования (мутуализм, синергизм, сателизм). Когда одна из культур в зоне совместного культивирования «выходит наверх», подавляя рост второй культуры, независимо от последовательности их нанесения, такой вариант расценивали как слабый антагонизм. Исследование биосовместимости штаммов Lactobacillus paracasei 2, Lb. casei 104, Lb. casei 22, Lb. pontis 67, Pediоcoccus acidilactici Р1-6, Saccharomyces cerevisiae ЛВ, Lb. paracasei 127, Lb. helveticus 4Ш1, Lb. pontis 9K3, Lb. paracasei 129, Saccharomyces cerevisiae A-28 с применением методики совместного культивирования на плотной питательной среде позволило нам разделить их на 2 группы: штаммы со слабой степенью антагонизма и биосовместимые штаммы (рис. 1). Рис. 1. Биосовместимость штаммов молочнокислых бактерий и дрожжей Перспективным способом приготовления ржаной закваски является использование консорциума, включающего молочнокислые бактерии в чистом виде или смешанные с дрожжами. Для создания нового консорциума для приготовления ржаной закваски нами отобраны для включения в композицию 3 культуры МКБ - Lb. paracasei 2, Lb. pontis 67, Pediоcoccus acidilactici Р1-6 и дрожжи Saccharomyces cerevisiae ЛВ, обладающие соответствующими технологическими и биологическими свойствами и биосовместимостью. Эти штаммы отбирались путем скрининга культур молочнокислых бактерий и дрожжей по параметрам культивирования заквасок на среде МRS - таких как температура, продолжительность культивирования, бродильная активность, антагонистическая активность, энергия кислотообразования и биосовместимость. Штаммы Lb. paracasei 2, Lb. pontis 67, Pediоcoccus acidilactici Р1-6 и Saccharomyces cerevisiae ЛВ, входящие в состав консорциума, обладают высокой кислотообразующей активностью, биохимической и антагонистической активностью, т.е. способностью подавлять возбудителей картофельной болезни хлеба. Таблица 2 Антагонистические свойства консорциума по отношению к B. subtilis штамм АТСС-6633 Наименование микроорганизмов Зона подавления роста B. subtilis, мм Lactobacillus paracasei 2 19±1,0 Lactobacillus pontis 67 15±1,0 Pediоcoccus acidilactici Р1-6 21±1,0 Консорциум 22±2,5 Консорциум при росте на среде MRS имеет высокий титр клеток (не менее 1012 КОЕ/г), стабилен - способен сохранять свои свойства не менее 10 пассажей и обладает более высокой антагонистической активностью по сравнению с входящими в его состав отдельными штаммами молочнокислых бактерий (табл. 2). Ржаную закваску на консорциуме готовили в два этапа. 1. Приготовление жидкой биомассы консорциума. Чистые культуры Lactobacillus paracasei 2, Lactobacillus pontis 67, Pediоcoccus acidilactici Р1-6 и Saccharomyces cerevisiae ЛВ в соотношении 1:1:05:2,5 вносили в питательную среду МRS. Термостатировали при температуре +35 °С в течение 18 часов до титруемой кислотности 24 град. Полученный консорциум используется для приготовления ржаной закваски. 2. Приготовление ржаной закваски. Ржаную закваску получали путем смешивания 50 мл жидкой биомассы консорциума с 500 мл мучной питательной смеси, которая ставилась в термостат для заквашивания при температуре 35 ºС на 18 часов. Технологическая характеристика и антагонистическая активность консорциума ржаной закваски представлены в табл. 3. Таблица 3 Технологическая характеристика консорциума Показатель Характеристика закваски Консистенция и внешний вид Густоватая жидкость Вкус Ржаного хлеба, без посторонних привкусов Запах Аромат ржаного хлеба Цвет Бежевый Время сквашивания мучной смеси при внесении 10 % посевных культур, ч 18 Температура при сквашивании, ºС 35 Кислотность, град 24 Активная кислотность, рН 3,60 Бродильная активность, мл СО2 1,5 Титр клеток, КОЕ/г 1012 Антагонистическая активность, диаметр зоны, мм 22±1,0 Таким образом, создан новый активный консорциум молочнокислых бактерий и дрожжей Lactobacillus paracasei 2, Lactobacillus pontis 67, Pediоcoccus acidilactici Р1-6 и Saccharomyces cerevisiae ЛВ для использования в разводочном цикле приготовления ржаных заквасок. Консорциум микроорганизмов хранится и рассылается на предприятия Казахстана в лиофильно-высушенном виде.